CURSO AVANZADO DE MICROSCOPÍA CONFOCAL 2011

Detección y Análisis de interacciones moleculares en células

Organizadores:

Dra. Lía Pietrasanta (CMA-UBA, Buenos Aires).

Dr. Alfredo Cáceres (INIMEC-CONICET, Córdoba)

Lugar:

Instituto de Investigación Médica Mercedes y Martín Ferreyra, Córdoba, Argentina

Fecha:

13 al 19 de junio de 2011

Auspicio:

Sistema Nacional de Microscopías- Olympus Latin America

 

Apertura Inscripción: 10 de mayo del 2011

Cierre Inscripción: 26 de mayo del 2011


Programa:

MÓDULO I- INTRODUCCIÓN A LA MICROSCOPÍA FUNCIONAL
• Regulación espacio-temporal de los fenómenos biológicos.
o Escalas temporales: redes de transcripción y redes de señalización
o Escalas espaciales:
o La dimensión espacial como una dimensión extra de "cálculo".
o Procesos de organización
• Las interacciones como fuente de variedad y robustez de la respuesta celular.
o La respuesta celular ante estímulos externos
o Redes de Señalización integradoras del estado celular y el estimulo
externo
o Tipos de respuesta
• La necesidad de una microscopía funcional.

MÓDULO II- CONCEPTOS FUNDAMENTALES DE MICROSCOPÍA AVANZADA
• Conceptos fundamentales de microscopía.
o Longitud de onda, coherencia temporal y espacial
o Interferencia y Difracción, profundidad de foco
o Fuentes de luz y detectores
o Óptica
o Sondas para marcado y preparación de muestras
• Localización versus Resolución.
o Transferencia de frecuencias de un microscopio
• Conceptos básicos, uso y aplicaciones de:
o Microscopía de fluorescencia
o Microscopía Confocal Espectral y Deconvolución Espectral
o Microscopía Confocal de Disco Giratorio (DSU), Microscopía 3D y 4D
o Microscopía de Fluorescencia por Reflexión Total Interna (TIRFM)
• Técnicas de super-resolución en campo lejano.
o STED
o PALM
• Técnicas de super-resolución en campo cercano.
o Conceptos básicos de campo cercano
o Super-resolución espacial en campo cercano
o Transferencia de campo cercano a campo lejano

MÓDULO III- DETECCIÓN Y ANÁLISIS DE INTERACCIONES ENTRE
MOLÉCULAS EN CÉLULAS
• Transferencia de energía resonante (FRET) como sensor de proximidad.
o Fundamentos de Homo y Hetero-FRET
o Técnicas para la medición de FRET
o Diseño de biosensores
o Aplicaciones biológicas
o Adquisición, procesamiento y análisis de datos
• Microscopía por vida medida de la fluorescencia (FLIM)
o Fundamentos de FLIM: frequency versus time domain
o Técnicas para la medición de FLIM
o Aplicaciones biológicas
o Adquisición, procesamiento y análisis de datos
• Recuperación de la Fluorescencia luego del Fotoblanqueo (FRAP)
o Fundamentos de FRAP
o Aplicaciones biológicas
o Adquisición, procesamiento y análisis de datos
• Espectroscopía por correlación de fluorescencia (FCS)
o Fundamentos de FCS
o Instrumentación y técnicas
o Aplicaciones biológica
o Adquisición, procesamiento y análisis de datos
• Microscopía de Fuerza Atómica basada en Reconocimiento Molecular (MR-AFM)
o Fundamentos de MR-AFM
o Instrumentación y técnicas
o Aplicaciones biológicas
o Adquisición, procesamiento y análisis de datos

MÓDULO IV- PRÁCTICA SOBRE DETECCIÓN Y ANÁLISIS DE INTERACCIONES
ENTRE MOLÉCULAS EN CÉLULAS
FRET-FLIM-DSU-TIRFM
Sondas plasmónicas para microscopía de alta resolución nanoRaman
Fuerzas en campos confinados: Pinzas ópticas

Profesores:

Dra. Andrea Bragas, Laboratorio de Electrónica Cuántica, Depto. de Física & Instituto
de Física de Buenos Aires (IFIBA, CONICET), Universidad de Buenos Aires, Buenos
Aires, Argentina.
Dr. Carlos Bustamante, Howard Hughes Medical Institute, the California Institute
for Quantitative Biomedical Research, Lawrence Berkeley National Laboratory, the
Department of Physics at the University of California, Berkeley, Estados Unidos.
Dr. Alfredo Cáceres, Instituto de Investigación Médica "Mercedes y Martín Ferreyra",
INIMEC-CONICET, Córdoba, Argentina.
Dra. Dolores Carrer, Instituto de Investigación Médica "Mercedes y Martín Ferreyra",
INIMEC-CONICET, Córdoba, Argentina.
Dr. Eduardo Coronado, Facultad de Ciencias Químicas, Universidad Nacional de
Córdoba, Córdoba, Argentina.
Dr. Hernán Grecco, Department Systemic Cell Biology, Max Planck Institute of
Molecular Physiology, Dortmund, Alemania.
Dra. Elizabeth Jares, Departamento de Química Orgánica y CIHIDECAR-CONICET,
Universidad de Buenos Aires, Buenos Aires, Argentina.
Dr. Carlos Más, Olympus LatinAmerica, Córdoba, Argentina.
Dra. Lía Pietrasanta, Centro de Microscopías Avanzadas, Facualtad de Ciencias
Exactas y Naturales, Universidad de Buenos Aires, Buenos Aires, Argentina.

Requisitos para pedir becas al curso:
1. Ser graduado de Facultades de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales, o Medicina,
o Ciencias Químicas, o Psicología de Universidades Nacionales (Públicas o
Privadas) o extranjeras, y estar cursando estudios de postgrado (e.g. Doctorado).
Ser Investigador jóven (Categorías Asistente o Adjunto de CONICET o equivalente
de Universidades Nacionales Públicas o Privadas).
2. Acreditar conocimientos en Microscopía de Fluorescencia o Confocal (e.g. Haber
realizado y aprobado Cursos Basicos de Microscopía Confocal). Demostrar que el
uso de técnicas de microscopía óptica de avanzada es de fundamental importancia
para el desarrollo de su tarea de investigación. DE ser posible enviar publicaciones
que acrediten el uso de microscopía como herramienta fundamental de análisis
experimental. Señalar disponibilidad de equipamiento de microscopía en su lugar
de trabajo o en instituciones vecinas a las cuales puede acceder. En caso de ser
posible, acreditar pasantías en Centros/Facilidades de Microscopía.
3. Adjuntar CV (hasta 5 paginas).
4. Carta de intención en donde se explica porque este Curso es de importancia para
el desarrollo de su tarea de investigación.
5. Adjuntar Plan de trabajo (No mayor a 5 páginas).
6. Opcional: Cartas de recomendación.

Toda la información debe dirigirse a:

Dra. Lia Pietrasanta: Centro Microscopía Avanzada (CMA), FCEN-UBA. lia@df.uba.ar
Cc
Dr. Alfredo Cáceres: INIMEC-CONICET. acaceres@immf.uncor.edu
 

Comments are closed.